浮游植物样品

2.3.2.1 采样工具与采样方法

一般情况下，在湖泊、水库和池塘等水体中，可用有机玻璃采水器采样。有机玻璃采样器为圆柱形，上、下底面均有活门。采水器沉入水中，活门自动开启，沉入哪一深度就能采到哪一水层的水样。采水器内部有温度计，可同时测量水温。有机玻璃采水器现有1000 mL、1500 mL、2000 mL 等各种容量和不同深度的型号。

定性标本用浮游生物网采集。浮游生物网呈圆锥形，网口套在铜环上，网底接盛水器。网的本身用筛绢制成，根据筛绢孔径不同划分网的型号。25#网网孔 0.064 mm，用于采集藻类、原生动物和轮虫。13#网网孔 0.112 mm，用于采集枝角类和桡足类。采样时用浮游生物网在水面下或 0.5 m 水深处以每秒 20 ～30 cm 的速度作 “∞ ”形来回拖动 (网内不得有气泡) 约 3 min。定性工作是在显微镜下观察，用测微尺测量，按标本的形态、构造、内含物、大小，参考藻类分类学资料鉴定属种。

2.3.2.2 固定和浓缩

水样采集之后，马上加固定液固定，以免时间延长标本变质。每升水样加入 15 mL左右鲁哥氏液 (Lugols solution) 固定保存。为防止样品褪色，在运输和保存过程中，样品置于暗处或在1000mL样品中加1mL饱和硫酸铜溶液。鲁哥氏液配制方法是将碘化钾60g溶于200mL蒸馏水中，再加碘40g，溶解后加蒸馏水至1000mL。也可以用福尔马林固定液，其配制方法是:福尔马林(市场销售的40%甲醛)4mL、甘油10mL、水86mL。从野外采集并经固定的水样，带回实验室必须进一步沉淀浓缩。具体步骤如下:

(1)将水样倾入沉淀器沉淀。

(2)24h内，将沉淀器轻轻旋转两次，使黏附在器壁上的生物下沉，然后再静置24h。

(3)用内径3～5mm左右的橡皮管灌满蒸馏水，利用虹吸法将上清液缓慢吸出。切不可搅动沉淀器底部的标本，万一搅动，则重新沉淀。虹吸管进入水样的一端，始终低于水面，以免吸出漂浮水面的生物。虹吸速度不可过快，一般吸完980mL水样约需20～30min。虹吸管进入水样的一端最好用25#筛绢扎口，以防标本流失。

(4)最后剩20mL水样于漏斗底部，搅匀倒入30mL定量瓶中。为减少标本损失，吸取10mL虹吸出来的该水样的上清液，冲洗沉淀器壁的残留生物，冲洗液加到30mL定量瓶中，最终将浓缩样品定容至30mL，并注意贴上标签。作为长期保存的浮游植物样品，在实验室内浓缩至30mL后补加1mL40%的甲醛溶液后密封保存。